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細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)課堂

發(fā)布時間:2024/10/10 9:12:21      閱讀次數(shù):193

 最初養(yǎng)細(xì)胞的時候看著師兄全副武裝進入細(xì)胞房是一件很神圣的事情。。。

 
時間長了才發(fā)現(xiàn),養(yǎng)細(xì)胞是一件痛苦并快樂的事情,要像對待小baby一樣照顧它、呵護它,細(xì)胞長的好心情就會像飛起來,細(xì)胞出現(xiàn)一點點狀況,心情就會跌入谷底。下面將小編多年養(yǎng)細(xì)胞的經(jīng)驗、心得與注意事項與大家交流一下。
 
一般來說,影響細(xì)胞培養(yǎng)的因素有很多,下面我們分為幾個小專題和大家分享一下。
 
1.血清篇2.添加劑篇3.細(xì)胞傳代篇
4.細(xì)胞凍存篇5.細(xì)胞污染篇6.原代細(xì)胞篇
血清篇
 
血清的熱滅活:
滅活方法:56℃滅活30min。滅活后,血清的外觀會發(fā)生變化,沉淀物顯著增多。熱滅活主要是滅活補體系統(tǒng),因為激活的補體系統(tǒng)會激活淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞。原代細(xì)胞和免疫細(xì)胞建議熱滅活血清。
 
血清的沉淀:
血清沉淀主要是血清中的各種蛋白、磷酸鈣和脂蛋白(如冷凝集素、纖維蛋白、玻連蛋白等)引起,不會影響血清質(zhì)量,使用時可以2000rpm
離心5分鐘,取上清使用。
 
可能會增加血清沉淀的操作:1、熱滅活;2、37℃培養(yǎng);3、反復(fù)凍融;4、伽馬射線照射;5、2-8℃長期保存;6、長期保存于可自動化霜的冰箱中(溫度不穩(wěn)定)。
 
血清保存:
建議血清保存于-20℃冰箱中,分裝使用,如果存放在4℃,請勿超過一個月。
 
血清的選擇:
血清為細(xì)胞的繁殖提供必須的生長因子,同時也是礦物質(zhì)、脂類及激素的來源。最常用的血清有小牛血清、新生牛血清、胎牛血清和馬血清等。牛血清是按照采血時間的早晚來分類的。采血時間越早,營養(yǎng)物質(zhì)越豐富,所含抗體也越少,因而胎牛血清適合要求高的細(xì)胞系和克隆化培養(yǎng)。 血清批次間的差別是不可避免的,建議您一旦選定了某個批次的血清,最好備貨,避免以后的麻煩。
 
添加劑篇
 
平衡鹽溶液
平衡鹽溶液主要是由無機鹽、葡萄糖組成;它的作用是維持細(xì)胞滲透壓平衡,保持pH穩(wěn)定及提供簡單的營養(yǎng);同時用于取材時組織塊的漂洗、細(xì)胞的漂洗、配制其他試劑等。
 
PBS磷酸鹽緩沖液:  (Phosphate-Buffered Saline),含135mM NaCl, 4.7mM KCl, 10mM Na2HPO4, 2mM NaH2PO4,pH值為7.4,經(jīng)過滅菌處理。
用途:用于細(xì)胞培養(yǎng)過程中細(xì)胞的洗滌或其他常規(guī)用途。
 
 
 
D-PBS:D-PBS溶液(Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline),含2.67mM KCl, 1.47mM KH2PO4, 137.93mM NaCl, 8.06mM Na2HPO4,pH值為7.4,經(jīng)過滅菌處理。
用途:不含鈣、鎂離子,多用于胚胎學(xué)方面的研究,常用于胚胎的沖洗液,凍存液和培養(yǎng)液。
 
 
 
Hank’s平衡鹽:Hanks' Balanced Salt Solution,簡稱HBSS,含137.93mM NaCl, 5.33mM KCl, 4.17mM NaHCO3, 0.441mM KH2PO4, 0.338mM Na2HPO4, 5.56mM D-Glucose。經(jīng)過無菌處理。
用途:可用于在大氣環(huán)境下維持細(xì)胞生理 pH 的緩沖液,用于細(xì)胞培養(yǎng)過程中細(xì)胞的洗滌等常規(guī)用途。
 
 
 
緩沖液
絕大多數(shù)細(xì)胞的最佳生長條件是pH 6.8-7.8。多數(shù)培養(yǎng)基利用碳酸氫鈉進行緩沖,碳酸氫鈉的緩沖需要二氧化碳。 NaHCO3溶液:7.5% NaHCO3溶液(Sodium Bicarbonate Solutioin)用水配制,已經(jīng)過過濾除菌。
用途:常用于細(xì)胞培養(yǎng)過程中調(diào)節(jié)培養(yǎng)基pH值。
 
 
 
 
細(xì)胞傳代篇
 
胰酶消化細(xì)胞:
a.吸去培養(yǎng)液,用無菌的PBS、Hanks液或無血清培養(yǎng)液洗滌細(xì)胞一次,以去除殘余的血清。
b.加入少量胰酶細(xì)胞消化液,略蓋過細(xì)胞即可,室溫放置30秒至2分鐘。不同的細(xì)胞消化時間有所不同。
c.顯微鏡下觀察,細(xì)胞明顯收縮,并且肉眼觀察培養(yǎng)器皿底部發(fā)現(xiàn)細(xì)胞的形態(tài)發(fā)生明顯的變化;或者用槍吹打細(xì)胞發(fā)現(xiàn)細(xì)胞剛好可以被吹打下來。此時吸除胰酶細(xì)胞消化液。加入含血清的完全細(xì)胞培養(yǎng)液,吹打下細(xì)胞,即可直接用于后續(xù)實驗。
d.如果發(fā)現(xiàn)消化不足,則加入胰酶細(xì)胞消化液重新消化。
如果發(fā)現(xiàn)細(xì)胞消化時間過長,未及吹打細(xì)胞,細(xì)胞已經(jīng)有部分直接從培養(yǎng)器皿底部脫落,直接用胰酶細(xì)胞消化液把細(xì)胞全部吹打下來。1000-2000g離心1分鐘,沉淀細(xì)胞,盡量去除胰酶細(xì)胞消化液后,加入含血清的完全培養(yǎng)液重新懸浮細(xì)胞,即可用于后續(xù)實驗。
 
對于比較難消化的細(xì)胞,比如結(jié)腸癌細(xì)胞HCT116,HCT15,KM12,這些細(xì)胞一般需要少量的胰酶孵育,以恰好覆蓋細(xì)胞為宜,時間在5min左右,細(xì)胞呈流沙狀移動,即可終止消化。對于難消化的細(xì)胞,一般在trypsin中添加一些EDTA。
 
 
 
細(xì)胞凍存篇
 
細(xì)胞凍存遵守慢凍速融原則。細(xì)胞在凍存時,細(xì)胞冷到0℃以下,細(xì)胞器脫水,細(xì)胞中可溶性物質(zhì)濃度升高,并在細(xì)胞中形成冰晶,大的冰晶會造成細(xì)胞膜、細(xì)胞器的損傷和破裂,因此需要慢凍,防止大的冰晶產(chǎn)生;快融是防止小冰晶重結(jié)晶形成大冰晶。常用的低溫保護劑是DMSO,是一種滲透性保護劑,可迅速透入細(xì)胞,提高細(xì)胞膜對水的通透性,降低冰點,延緩凍結(jié)過程,使水滲透到細(xì)胞外形成冰晶。細(xì)胞凍存液主要成分是高糖DMEM、適量澳洲進口優(yōu)質(zhì)胎牛血清及DMSO。
 
細(xì)胞凍存步驟:胰酶消化細(xì)胞--吹打成細(xì)胞懸液--離心獲取細(xì)胞沉淀--添加凍存液--程序性降溫凍存細(xì)胞--做好凍存記錄。
 
注意事項:1、0至-60℃是低溫?fù)p傷發(fā)生的主要溫度范圍,被稱為“危險溫區(qū)”,細(xì)胞短暫放置后應(yīng)立刻轉(zhuǎn)移到-80℃,長期保存需要轉(zhuǎn)移到液氮罐中,并定期檢查液氮罐,及時添加。
 
 
細(xì)胞污染篇
 
養(yǎng)細(xì)胞最頭痛的就是遇到污染問題,總是讓你猝不及防,又無從尋找原因,F(xiàn)整理一些細(xì)胞培養(yǎng)過程中常遇見的污染問題,供君參考。
 
細(xì)胞污染根據(jù)污染源的不同主要分為3類:化學(xué)性污染、物理性污染和微生物污染,其中微生物污染是最常見也是最嚴(yán)重的,一旦發(fā)生,無法挽救,只能將細(xì)胞丟棄。下面簡單介紹一下常見的微生物污染。
 
霉菌污染:霉菌污染種類很多,多為曲霉菌、毛霉菌、孢子霉、白念珠菌、酵母菌等。
 
污染源:實驗人員(實驗服)
霉菌污染后短期內(nèi)不會引起培養(yǎng)液的渾濁,會在培養(yǎng)液中形成白色或淡黃色漂浮物,一般肉眼可見,易被發(fā)現(xiàn)。4d左右倒置顯微鏡下可以觀察到縱橫交錯的菌絲。
酵母污染更容易觀察,培養(yǎng)物變渾濁,顯微鏡下可以觀察到卵圓形或球形顆粒,散在細(xì)胞上及細(xì)胞周邊生長,有些會芽生較小顆粒。
確認(rèn)是霉菌污染后,需要將細(xì)胞直接丟棄,將實驗環(huán)節(jié)徹底消毒處理。
 
細(xì)菌污染:
常見的細(xì)菌污染主要是大腸桿菌、假單胞菌、 葡萄球菌等,其中革蘭陽性菌較為多見。
 
污染源:操作不當(dāng)或是器材消毒不嚴(yán),或是各種營養(yǎng)成分隱性污染細(xì)菌沒有被檢測出來所造成的。
污染速度快,多數(shù)情況下細(xì)胞培養(yǎng)液短時間內(nèi)變黃,pH值降低,明顯渾濁,倒置顯微鏡下觀察,細(xì)胞漿出現(xiàn)大量顆粒,細(xì)胞變圓或崩潰,從壁上脫落,細(xì)胞培養(yǎng)液中有大量圓球狀顆粒物漂浮,呈細(xì)沙狀,細(xì)胞間可以觀察到菌體存在。必要時可以取少量培養(yǎng)液接種到細(xì)菌培養(yǎng)板或細(xì)菌培養(yǎng)基中培養(yǎng)、檢測。一旦發(fā)生細(xì)菌污染,早期時可以增大雙抗的使用倍數(shù),用藥24-48小時后更換成常規(guī)培養(yǎng)基,污染晚期,細(xì)胞需要棄掉,復(fù)蘇新的細(xì)胞。
 
支原體污染:
污染源:血清
大小介于細(xì)菌與病毒之間的無細(xì)胞壁的原核細(xì)胞,對抗生素不敏感,可穿過0.22 μm 的孔徑濾膜,不能用肉眼或光學(xué)顯微鏡檢測,在細(xì)胞培養(yǎng)過程中是最容易忽視的一類污染。
 
支原體污染早期,細(xì)胞沒有明顯的變化,只有污染嚴(yán)重后,細(xì)胞增殖速度降低,細(xì)胞脫落。并且支原體可以通過移液、傾倒液體時產(chǎn)生具有潛在感染力的飛沫和吸附的塵埃,沉積在物體表面,污染操作環(huán)境,引起交叉感染和再次污染。懷疑支原體污染,可以使用支原體檢測試劑盒進行檢測。
 
 
 
污染較輕時,使用支原體去除試劑盒進行處理
 
 
 
同時嚴(yán)格清理實驗操作環(huán)境。
ps:從外部獲取的細(xì)胞請記得要進行支原體污染檢測呦!
 
黑膠蟲污染:
黑膠蟲是學(xué)術(shù)界爭議比較大的一類污染,不能確定是生物還是非生物,可以穿透濾膜,也可以通過空氣傳播。
污染源:血清
開始污染時對細(xì)胞無影響,當(dāng)達(dá)到一定數(shù)量時會抑制細(xì)胞生長,培養(yǎng)基沒有變化,顯微鏡下可以觀察到點狀或片狀游動小體。細(xì)胞增殖旺盛之后會自然消失,除更換血清外無須特殊處理。
 
病毒污染:
病毒污染不會影響細(xì)胞的傳代培養(yǎng),但生產(chǎn)疫苗是不安全的。
污染源:動物血清或者細(xì)胞系,常見于雜交瘤細(xì)胞。
病毒污染極為隱蔽,很難檢測。細(xì)胞液沒有變化,大多數(shù)受病毒污染的細(xì)胞也不會產(chǎn)生形態(tài)變化及細(xì)胞病理現(xiàn)象,僅有少部分病毒會造成細(xì)胞變圓、腫脹,脫落。 懷疑發(fā)生病毒污染可以用血細(xì)胞吸附試驗、免疫熒光抗體法及電子顯微鏡法有效檢出病毒。通常病毒污染的清除是十分困難的,可以重新引入高質(zhì)量的細(xì)胞株。
 
非同種細(xì)胞污染:
即細(xì)胞交叉污染,由于在培養(yǎng)過程中各種細(xì)胞同時進行,而所用器具或液體混雜使用所致。細(xì)胞發(fā)生交叉污染后由于難以分離細(xì)胞,所以一般是丟棄細(xì)胞,重新獲取實驗所需細(xì)胞。 所以在吸取兩種以上的使用液時要注意更換吸管,防止交叉污染。
 
原代細(xì)胞篇
 
注意事項:
原代細(xì)胞是剛從體內(nèi)取出的組織中獲得的細(xì)胞,要求不嚴(yán)格的話,十代以內(nèi)都算原代細(xì)胞。因為離體時間短更能接近體內(nèi)狀況,同時對體外培養(yǎng)條件更加苛刻,需要更接近體內(nèi)環(huán)境培養(yǎng)條件。
 
1、計數(shù)前,注意吸盡平皿里的細(xì)胞,充分混勻,使細(xì)胞分散成單個細(xì)胞,每次操作只處理一株細(xì)胞,以免造成細(xì)胞交叉污染。
2、原代細(xì)胞未經(jīng)永生化處理,因此群體倍增次數(shù)有限。為了防止遺傳上的變化,最好盡快開始做實驗。另外,為了防止混入雜細(xì)胞比例的增加,要經(jīng)常觀察細(xì)胞形態(tài)。
3、原代細(xì)胞再凍存后,細(xì)胞會老化,也可能引起機能變化,所以不建議凍存。細(xì)胞凍存也是細(xì)胞死傷的主要原因。
4、如果DMSO的濃度足夠低,不會對細(xì)胞造成傷害,復(fù)蘇原代細(xì)胞建議用帶有血清的完全培養(yǎng)基溶解后鋪瓶,第二天換液去除DMSO。
5、原代細(xì)胞傳代時,要用低濃度的胰酶消化,在顯微鏡下看到細(xì)胞開始變圓、脫落后迅速終止胰酶。建議采用含10%血清的完全培養(yǎng)基作為胰酶終止劑終止消化。
 
 


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