注 意 ：正式測定前取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
H2O2是生物體內最常見的活性氧分子，主要由SOD和XOD等催化產(chǎn)生，由CAT和POD等催化降解。H2O2不僅是重要的活性氧之一，也是活性氧相互轉化的樞紐。一方面，H2O2可以直接或間接地氧化細胞內核酸，蛋白質等生物大分子，并使細胞膜遭受損害，從而加速細胞的衰老和解體；另一方面H2O2也是許多氧化應急反應中的關鍵調節(jié)因子，。
測定原理：
H2O2與硫酸鈦生成黃色的過氧化鈦復合物，在415nm有特征吸收。
需自備的儀器和用品：
可見分光光度計、臺式離心機、可調式移液器、1 mL玻璃比色皿、丙酮60mL、濃鹽酸10mL、研缽和冰。
試劑的組成和配制：
試劑一：丙酮60mL×1瓶，4℃保存；（自備）
試劑二：粉劑×1瓶，4℃保存；臨用前加入10mL濃鹽酸充分溶解備用。用不完的試劑4℃保存；(溶解時間較長，約30min，可40℃-60℃加熱溶解，務必提前準備)
試劑三：15mL×1瓶，4℃保存；
試劑四：60mL×1瓶，4℃保存；
H2O2提取：
1、細菌或細胞樣品的制備：收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數(shù)量（104個）：試劑一體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1mL試劑一），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；用試劑一定容至1mL；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
2. 組織樣品的制備：按照組織質量（g）：試劑一體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL試劑一）進行冰浴勻漿；轉移至EP管中，用試劑一定容至1mL，8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
3、血清（漿）樣品：直接檢測。
測定步驟：
1、 分光光度計預熱30min以上，調節(jié)波長至415nm，蒸餾水調零。
2、 將試劑二、三和四37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴10min以上。
3、 在EP管中按順序加入下列試劑
| 試劑名稱（μL） | 測定管 | 對照管 |
| 樣本 | 吸取的量的為全部上清液 |
|
| 試劑一 |
| 1000 |
| 試劑二 | 100 | 100 |
| 試劑三 | 200 | 200 |
4000g，25℃離心10min，棄上清，留沉淀
| 試劑四 | 1000 | 1000 |
加入試劑四溶解沉淀后，室溫靜置5min，倒入比色皿中，測定415nm處吸光值A。對照管只要做一次即可。計算ΔA＝A測定-A對照。
注意事項：
1、由于試劑一易揮發(fā)，試劑一必須先預冷再加，研磨時必須在冰上研磨。
2、本試劑盒中試劑的揮發(fā)性較高，請帶一次性手套和口罩。
H2O2含量計算：
1、標準條件下測定的回歸曲線，y = 0.7488x + 0.0006 (x為標準品濃度，μmol/mL；y為ΔA)。
2、血清（漿）中H2O2含量的計算：
H2O2含量（μmol/mL）＝(ΔA-0.0006) ÷0.7488=1.34×(ΔA-0.0006)
3、細菌、細胞或組織中H2O2含量計算
（1）按照蛋白濃度計算
H2O2含量(μmol/mg prot)= [ (ΔA-0.0006) ÷0.7488×V1]÷(V1×Cpr)= 1.34×(ΔA-0.0006)÷Cpr
需要另外測定，建議使用本公司BCA蛋白質含量測定試劑盒。
（2）按照樣本質量計算
H2O2含量(μmol/g鮮重)= [ (ΔA-0.0006) ÷0.7488×V1]÷(W ×V1÷V2)= 1.34×(ΔA-0.0006)÷W
(3 ) 按照細菌或細胞密度計算：
H2O2含量(μmol/104)= [ (ΔA-0.0006) ÷0.7488×V1]÷(500×V1÷V2)=0.0027×(ΔA-0.0006)
V1：加入反應體系中樣本體積，1mL；V2：加入提取液體積，1mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細胞或細菌總數(shù)，500萬。
注意：標曲線性范圍為0.1μmol/mL到2μmol/mL，吸光度ΔA線性范圍為0.07-1.5，若ΔA超過1.5則需要稀釋，計算公式乘以相應稀釋倍數(shù)。
