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環(huán)氧瓊脂糖凝膠6B

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環(huán)氧活化高流速 6B 瓊脂糖微球是將環(huán)氧基團鍵合在瓊脂糖微球 6FF 上凍干形成的一種活性中間體,可直接偶聯(lián)配基制備分離介質(zhì),用于生物大分子的純化分離。

1. 外觀

本品為白色球狀凝膠,無嗅、無味、無肉眼可見雜質(zhì)。

2. 理化指標

環(huán)氧基

質(zhì)

高流速 6%瓊脂糖微球

顆粒形狀及大小

球形50~160 μm

配基密度

20~40μmol 環(huán)氧基/ml 介質(zhì)

最高流速(25℃

300 cm/h*

耐壓

0.2 MPa

pH 適用范圍**

2~14

 

    化學穩(wěn)定性**

以下溶液中穩(wěn)定:0.1mol/L NaOH;6mol/L 鹽酸胍;8mol/L 尿素;4 mol/L 氯化鈉一般有機溶劑;非離子型表面活性劑

*檢測條件: 層析柱 16mm×300mm*柱床高 15cm,25, 流動相為 0.1mol/LNaCl

**是指偶聯(lián)配基后的分離介質(zhì)的性能3.運輸

運輸中應避免日曬、雨淋、重壓,嚴禁與有毒、有害物品混運。

4. 貯存:冷凍干燥的產(chǎn)品應密封貯存在 8℃以下,對于溶脹的偶聯(lián)后的介質(zhì)應保存于 4℃~8℃通風、干燥、清潔的地方。避免與氧化劑接觸。用過的柱子貯存在 4℃(20% 乙醇)。

5. 保質(zhì)期:暫定 2 年。

6. 應用

環(huán)氧活化瓊脂糖微球FF 是將環(huán)氧基團鍵合在瓊脂糖微球 6FF 上凍干形成的一種活性中間體,可直接偶聯(lián)含氨基、巰基和羥基的配基制備分離介質(zhì),用于生物大分子的純化分離。

下面簡要介紹環(huán)氧活化瓊脂糖微球偶聯(lián)含氨基配基的使用過程。

6.1 干粉的溶脹

   稱取一定量的環(huán)氧活化高流速瓊脂糖微球凍干粉,在蒸餾水中懸浮溶脹(1g 干粉約溶脹為 34ml 凝膠),放置大約 1 小時后抽濾,并用約 200mlPH 7去離子水洗滌干凈其中的添加劑,并在漏斗中抽干。

6.2 配基的偶聯(lián)

一般配基偶聯(lián)的過程如下:

(1) 偶聯(lián)溶劑:可用去離子水、碳酸鹽緩沖液和磷酸鹽緩沖液。不能用含氨基和其他含親核試劑的溶液。有時需要有機溶劑溶解配基,如用 50%二甲基甲酰胺和二氧六環(huán)等。

(2) 取一定量的配基溶解到偶聯(lián)用的緩沖溶液中,使其完全溶解,最低濃度為 200μmol配基/ml 凝膠。凝膠與緩沖溶液以 10.5 11 的比例混合懸浮反應。

(3) 將溶脹的凝膠懸浮到含有配基的緩沖溶液中,在 20℃~45℃的水浴中搖蕩 16 小時。也可以用其他攪拌方法使配基偶聯(lián),請勿用磁力攪拌。

(4) 反應完全后,再洗滌掉緩沖液中的多余的配基。

(5) 殘余活性基團的消除,將反應完洗滌過的凝膠懸浮到 1mol/L 乙醇胺(PH 8)的溶液中,在 40℃~50℃最少反應 4 小時或者室溫反應過夜。

(6) 在反應完后,用含有 0.5mol/LNaCl  0.1mol/L 醋酸緩沖液PH 4.0和含有0.5mol/LNaCl 的偶聯(lián)緩沖液(PH 8.3交替洗滌,至少重復以上循環(huán)洗滌 3 次。

6.3 裝柱

 

⑴讓所有的材料和試劑達到室溫。配制初始緩沖液(平衡液)和洗脫緩沖液。

 

⑵根據(jù)柱子大小取所需量的凝膠,清洗掉溶液,抽干,用初始緩沖液(按凝膠:緩沖液=31 的比例)配成勻漿。勻漿作脫氣處理。

⑶將柱內(nèi)及柱子底端用水或緩沖液潤濕并保持一小段液位(液面略高于濾膜),務必使  底端無氣泡。

⑷用玻璃棒引導勻漿沿著柱內(nèi)壁一次性倒入柱內(nèi),注意勿使產(chǎn)生氣泡。打開柱子出液口,使凝膠在柱內(nèi)自由沉降,連結好柱子頂端柱頭。

⑸打開蠕動泵,讓緩沖液用使用時流速的 1.33 倍的流速流過,使柱床穩(wěn)定。用 2~3 倍柱體積的緩沖液平衡柱子。

6.4 平衡

讓平衡緩沖液以一定流速流過柱子,到流出液電導和 pH 不變。平衡緩沖液一般是根據(jù)需要純化的蛋白來決定用哪種緩沖液。

6.5 上樣

⑴樣品用平衡液配制,渾濁的樣品要離心和過濾后上樣。

⑵一般情況是讓目標產(chǎn)品結合在柱子上,用平衡液洗去雜質(zhì),再選擇一種洗脫液洗下目標產(chǎn)品。

⑶介質(zhì)對樣品組分吸附的程度取決于介質(zhì)配基的親和作用、樣品的親和性質(zhì)、流動相的  組成和溫度。

(4)再用緩沖液平衡到流出液電導和 pH 不變。

6.6 洗脫

洗脫液也要根據(jù)需要純化的蛋白決定。

6.7 再生

對于使用之后的凝膠,以 2~3 倍柱體積的 0.1mol/L Tris·HCl+0.5mol/L NaCl   PH=8.5 0.1mol/L NaAc+0.5mol/L NaClPH=4.5)依次反復沖洗 3~4 次,進行再生。

6.8 在位清洗

根據(jù)偶聯(lián)的配基選擇在位清洗的方法,以洗去柱子污染物同時不傷害柱子為原則。對于一般的污染,用 0.1mol/L NaOH 進行較長時間的清洗,對配基基本沒有的影響;當嚴重污染后,可用 0.5mol/L NaOH 進行短時間的清洗;對于介質(zhì)中含有其他試劑的,可用含有 8 mol/L 尿素和 6 mol/L 的鹽酸胍的溶液進行在位清洗。若有失活蛋白或脂類物質(zhì)洗不干凈,可用非離子表面活性劑如 0.1% Triton 洗滌。清洗完畢后,用至少 3 倍緩沖液平衡柱子。

6.9 注意在裝柱、使用和保存柱子的時候,要避免柱子流干,氣泡進入。

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