注 意：正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
G6PDH（EC 1.1.1.49）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中，是磷酸戊糖途徑的關鍵酶，催化 6-磷酸葡萄糖氧化為 6 -磷酸葡萄糖酸內酯，同時將NADP+還原為NADPH，供生物合成及維持細胞內的還原狀態(tài)用。因此6-磷酸葡萄糖脫氫酶活性的高低可以從一定程度上反映出生物體的生物合成和抗氧化能力。
測定原理：
G6PDH催化NADP+還原生成NADPH，在340 nm下測定NADPH增加速率。
需自備的儀器和用品：
紫外分光光度計、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1 mL石英比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制：
提取液：60mL×1瓶，4℃保存；
試劑一：液體47.5 mL×1瓶，4℃保存；
試劑二：粉劑×1支，-20℃保存；
試劑三：粉劑×1支，-20℃保存；
樣本的前處理：
1、細菌、細胞或組織樣品的制備：
細菌或培養(yǎng)細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（104個）：提取液體積（mL）為1000~5000：1的比例（建議2000萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
組織：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
2、血清（漿）樣品：直接檢測。
測定步驟：
1、 分光光度計預熱30min以上，調節(jié)波長至340nm，蒸餾水調零。
2、 將試劑二和試劑三轉移至試劑一中充分溶解；在37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴10min以上；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。
3、 在1mL石英比色皿中加入50μL樣本和950μL試劑一，混勻后立即記錄340nm處1min后吸光值A1和 6min后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。
注意：若ΔA大于0.5，需將酶液用提取液稀釋，計算公式中乘以相應稀釋倍數。或將反應時間縮短至2min，使A2-A1小于0.5，可提高檢測靈敏度。
G6PDH活力單位的計算：
1、血清（漿）G6PDH活力的計算:
單位的定義：每mL血清（漿）每分鐘生成1 nmol的NADPH定義為一個酶活力單位。
G6PDH（nmol/min/mL）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷V樣÷T=643×ΔA
2、組織、細菌或細胞中G6PDH活力的計算:
（1）按樣本蛋白濃度計算：
單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘生成1 nmol NADPH定義為一個酶活力單位。
G6PDH（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣×Cpr) ÷T=643×ΔA÷Cpr
（2）按樣本鮮重計算：
單位的定義：每g組織每分鐘生成1 nmol NADPH定義為一個酶活力單位。
G6PDH（nmol/min /g 鮮重）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=643×ΔA÷W
（3）按細菌或細胞密度計算：
單位的定義：每1萬個細菌或細胞每分鐘生成1 nmol NADPH定義為一個酶活力單位。
G6PDH（nmol/min /104 cell）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(2000×V樣÷V樣總) ÷T=0.3215×ΔA
V反總：反應體系總體積，1×10-3 L；ε：NADPH摩爾消光系數，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.05 mL；V樣總：加入提取液體積，1 mL；T：反應時間，5 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；2000：細菌或細胞總數，2000萬。
