【產(chǎn)品名稱】
通用名稱：禽流感N2 熒光PCR檢測試劑盒（實時熒光PCR法）
英文名稱：Influenza A Virus Subtype N2 Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包裝規(guī)格】 50T/盒
【預期用途】
本試劑盒利用實時熒光PCR原理，定性檢測禽流感病毒N2亞型（AIV-N2），對禽流感病毒N2引起的禽流感的診斷和監(jiān)控具有重要指導意義。
【原 理】
本試劑盒針對禽流感病毒N2高度保守區(qū)域設計特異性引物和探針，在反應體系中含禽流感病毒N2基因組模板的情況下，PCR反應得以進行并釋放熒光信號。利用儀器對PCR過程中相應通道的信號強度進行實時監(jiān)測和輸出，實現(xiàn)檢測結果的定性分析。
【試劑盒組成】
| 序號 | 組成 | 50T/盒 |
| 1 | AIV-N2 RT-PCR反應液 | 875 μL×1管 |
| 2 | AIV-N2 混合酶液 | 125 μL×1管 |
| 3 | AIV-N2 陽性對照 | 40 μL×1管 |
| 4 | AIV-N2 陰性對照 | 40 μL×1管 |
| 5 | 說明書 | 1份 |
注：陰性對照為滅菌純水，陽性對照為含禽流感病毒N2亞型靶基因的質(zhì)粒。
【儲存條件及有效期】避光-20℃以下保存，避免反復凍融,有效期12個月。
【適用儀器】MyGo儀器系列、ABI 系列、Bio-Rad系列、Agilent Stratagene MX系列 、Roche LightCycler R480、杭州博日系列等多通道實時熒光定量PCR儀。
【禽流感N2 熒光PCR檢測試劑盒（實時熒光PCR法）樣本要求】
1.樣品取咽喉拭子和泄殖腔拭子，采集方法如下：
咽喉拭子，采取時要將拭子深入喉頭及上顎裂來回刮3次～5次，取咽喉分泌液；將咽喉拭子放人盛有1.0mL生理鹽水的離心管中備用，應避免標本間交叉污染。
2.標本收集后可立即檢測；若不能立即檢測，可置于2～8℃冷藏過 夜保存；如需長期保存，標本應凍存于-80℃，避免反復凍融。
【檢驗方法】
1. 試劑準備（試劑準備區(qū)）
（1）從冰箱中取出試劑盒, 從試劑盒中取出實驗所需試劑,充分融化混勻并瞬時離心以去除管壁附著液體。
（2）核算當次實驗所需要的反應數(shù)（n），并根據(jù)如下表所示反應體系計算當次實驗所需要的各種試劑量。
n =陰性對照數(shù)（1T）+陽性對照數(shù)（1T）+誤差預留量（1T）+樣本數(shù)
| 單反液配制表(每份) | RT-PCR反應液 | 17.5μL |
| 混合酶液 | 2.5 μL |
（3）在無菌離心管中加入上述試劑，充分混勻后瞬時離心。按照20 μL/管分裝量將試劑分裝至PCR反應管。
2.樣本準備（樣本處理區(qū)）
用QIAGEN、Roche公司RNA提取試劑盒提取RNA，具體操作按照其試劑盒說明書操作。
3.加樣
在上述制備好的PCR反應管中分別加入處理好的待測標本RNA各5 μl、終體積25 μl/管，蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心，轉移到PCR儀器上。
根據(jù)需要，在上述準備好的PCR反應管中分別加入陰性對照品以及陽性對照品各5 μl，終體積為25 μl/管，蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心，轉移到PCR儀器上。
4. PCR（PCR擴增區(qū)）
（1）取樣本處理區(qū)準備好的PCR反應管，放置在實時熒光定量PCR儀樣品槽相應位置，并記錄放置順序。
（2）按下表設置儀器核酸擴增相關參數(shù)進行PCR擴增。
| 反應體積 | 25 μL | 通道選擇 | FAM通道采集 AIV-N2熒光信號 |
| PCR 反應 條件 | 步驟 | 條件 | 循環(huán)數(shù) |
| 反轉錄 | 50℃：10分鐘（min） | 1 | |
| 預變性 | 95℃：3分鐘（min） | 1 | |
| PCR擴增 | 95℃：5秒（s） | 40 | |
| 55℃：40秒（s） （此階段結束時采集熒光信號） |
注：ABI系列熒光PCR儀在設置時不選ROX校正，設置淬滅基團選擇None
【參考值（參考范圍）】
1.試劑盒有效性判定：
（1）陽性對照：有典型S型擴增曲線或Ct值≤35。
（2）陰性對照：Ct值＞38或無Ct值，線形為直線或輕微斜線，無指數(shù)增長期。
2.標本結果判定：
（1）陽性：標本檢測結果Ct值≤35或有明顯指數(shù)增長期。
（2）可疑：標本檢測結果Ct值在35～38范圍內(nèi)。此時應對標本進行重復檢測，如重復實驗結果Ct值仍在35～38范圍內(nèi)，有明顯指數(shù)增長期，則判定為陽性，否則為陰性。
（3）陰性：標本檢測結果Ct值＞38或無Ct值。
【檢驗結果的解釋】
| 通道及檢測結果 | 標本檢測結果解釋 |
| FAM | |
| + | 標本中檢測出AIV-N2 |
| - | 標本中未檢測出AIV-N2 |
【檢驗方法的局限性】
1. 當檢測樣本中被檢核酸濃度低于本試劑盒的最低檢出限時可能會發(fā)生假陰性的結果。
2. 被檢樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中操作方式不當容易造成RNA降解而產(chǎn)生假陰性結果。
3. 樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中發(fā)生交叉污染，則容易得到假陽性結果。
【產(chǎn)品性能指標】
產(chǎn)品的最低檢出限為103 Copies/mL，產(chǎn)品CV值≤3%。
【禽流感N2 熒光PCR檢測試劑盒（實時熒光PCR法）注意事項】
1.使用本試劑盒的實驗室，應嚴格按照國家有關部分頒布的有關基因擴增檢驗實驗室管理規(guī)范進行管理；
2.為避免RNA降解，樣本處理過程應在0-4℃條件下操作，且完成實驗后立即上機檢測；樣本處理過程中使用的器具耗材應經(jīng)過無核酶處理；
3.各區(qū)域物品均為專用，不得交叉使用，以免污染；檢測結束后，應立即對工作臺清潔；
4.吸取反應液時，應盡量避免產(chǎn)生氣泡；上 PCR 儀前，應注意檢查各反應管是否蓋緊，以免液體蒸發(fā)造成結果不準確；
5.試劑盒所有試劑在使用前應該在常溫下充分融化混勻，并應瞬時離心；
6.試劑盒內(nèi)所配陰性和陽性對照在第一次使用前應全部轉移至標本準備區(qū)，并單獨存放；
7.為防止熒光干擾，應避免裸手直接接觸PCR反應管，并應避免在PCR反應管上進行任何標記；
8.檢測過程中使用過的吸頭，應直接打到盛有 10%次氯酸的廢物缸內(nèi)，檢測結束的PCR 反應管，切忌開蓋，并與其他廢棄物品一同滅菌后丟棄；工作臺及各種實驗用品應定期用 10%次氯酸、75%酒精或紫外燈進行消毒；
9.儀器擴增相關參數(shù)應按照本說明書相關要求進行設置；不同批號試劑不能混用；并在有效期內(nèi)使用。
